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《保健食品原料用菌種安全性檢驗(yàn)與評(píng)價(jià)技術(shù)指導(dǎo)原則(2020年版)》

2020-10-31

根據(jù)《中華人民共和國(guó)食品安全法》,經(jīng)與國(guó)家衛(wèi)生健康委協(xié)商一致,市場(chǎng)監(jiān)管總局制定了《保健食品及其原料安全性毒理學(xué)檢驗(yàn)與評(píng)價(jià)技術(shù)指導(dǎo)原則(2020年版)》《保健食品原料用菌種安全性檢驗(yàn)與評(píng)價(jià)技術(shù)指導(dǎo)原則(2020年版)》《保健食品理化及衛(wèi)生指標(biāo)檢驗(yàn)與評(píng)價(jià)技術(shù)指導(dǎo)原則(2020年版)》,現(xiàn)予印發(fā),自公告之日起施行。

附件:《保健食品及其原料安全性毒理學(xué)檢驗(yàn)與評(píng)價(jià)技術(shù)指導(dǎo)原則(2020年版)》《保健食品原料用菌種安全性檢驗(yàn)與評(píng)價(jià)技術(shù)指導(dǎo)原則(2020年版)》《保健食品理化及衛(wèi)生指標(biāo)檢驗(yàn)與評(píng)價(jià)技術(shù)指導(dǎo)原則(2020年版)》

市場(chǎng)監(jiān)管總局

2020年10月16日

保健食品原料用菌種安全性

檢驗(yàn)與評(píng)價(jià)技術(shù)指導(dǎo)原則(2020年版)

1 范圍

本指導(dǎo)原則規(guī)定了保健食品原料用細(xì)菌、絲狀真菌(子實(shí)體除外)和酵母的安全性評(píng)價(jià)中的致病性(毒力)檢驗(yàn)與評(píng)價(jià)程序和方法。

本指導(dǎo)原則適用于保健食品原料用菌種(包括保健食品配方用及原料生產(chǎn)用菌種)的致病性檢驗(yàn)與評(píng)價(jià)。

本指導(dǎo)原則不適用于基因改造微生物菌種和在我國(guó)無(wú)使用習(xí)慣的菌種致病性檢驗(yàn)與評(píng)價(jià)。

2 術(shù)語(yǔ)和定義

2.1 致病性,Pathogenicity

微生物感染宿主造成健康損害引起疾病的能力。

2.2 產(chǎn)毒能力,Toxigenicity

微生物產(chǎn)生對(duì)人和動(dòng)物有毒作用的活性代謝產(chǎn)物的能力。

2.3 毒性,Toxicity

微生物及其代謝產(chǎn)物對(duì)機(jī)體可能造成的潛在傷害(不良反應(yīng))。

3 對(duì)擬評(píng)價(jià)微生物菌種需提交的基本資料要求

在進(jìn)行致病性評(píng)價(jià)試驗(yàn)前,菌種送檢單位需提供以下資料供評(píng)價(jià)單位審核。

3.1 基本信息

擬評(píng)價(jià)菌種名稱(包括學(xué)名、俗名、曾用名、拉丁名等)、來(lái)源及用途。

3.2 菌種分類學(xué)資料

提供由有菌種鑒定資質(zhì)的機(jī)構(gòu)出具的對(duì)擬評(píng)價(jià)菌種的規(guī)范、科學(xué)的分類學(xué)(屬、種名稱及株)資料。細(xì)菌的分類和命名應(yīng)遵循原核生物分類學(xué)國(guó)際委員會(huì)(International Committee on Systematics of Prokaryotes)的規(guī)定,并符合原核生物國(guó)際命名法規(guī)(International Code ofNomenclature of Prokaryotes)要求。真菌的分類和命名應(yīng)按國(guó)際藻類、真菌和植物命名法規(guī)(International Code of Nomenclature for algae, fungi, and plants)進(jìn)行。

3.3 菌種鑒定資料

根據(jù)目前已有的知識(shí),提供基于表型及基因測(cè)序技術(shù)鑒定到種水平的資料。作為保健食品的功效成分(活菌),還應(yīng)提供鑒定到株水平的資料。

3.4 菌種生長(zhǎng)環(huán)境條件資料

提供擬評(píng)價(jià)菌種生長(zhǎng)最適培養(yǎng)基及培養(yǎng)條件(培養(yǎng)時(shí)間、培養(yǎng)溫度和濕度、光照等),以及菌種保藏及復(fù)壯方法等相關(guān)資料。

3.5 誘變菌種

經(jīng)過(guò)誘變的菌種還需提供詳細(xì)的菌種誘變方法(包括使用的誘變劑、誘變條件及誘變?cè)囼?yàn)流程等)和不少于100代(傳代間隔不少于7天)的遺傳穩(wěn)定性研究報(bào)告。

3.6 生產(chǎn)相關(guān)信息

包括但不限于擬評(píng)價(jià)菌種安全用于保健食品的生產(chǎn)記錄、工藝流程、企業(yè)標(biāo)準(zhǔn)等資料。

3.7 國(guó)內(nèi)外安全性評(píng)價(jià)資料綜述

基于國(guó)內(nèi)外文獻(xiàn)數(shù)據(jù),提供擬評(píng)價(jià)菌種的國(guó)內(nèi)外使用歷史和安全性評(píng)價(jià)資料,包括其致病性和產(chǎn)毒能力的報(bào)告、研究文獻(xiàn)或綜述等;若無(wú)擬評(píng)價(jià)菌種的上述資料,應(yīng)提供在親緣關(guān)系上與其相近種屬的安全性評(píng)價(jià)資料。

3.8 其他國(guó)家批準(zhǔn)資料

提供其他國(guó)家已批準(zhǔn)擬評(píng)價(jià)菌種作為膳食補(bǔ)充劑、功能食品或普通食品生產(chǎn)使用的相關(guān)證明資料。

3.9 其他需要說(shuō)明的信息。

4 評(píng)價(jià)方法

對(duì)已經(jīng)提供以上資料的擬評(píng)價(jià)菌株,可以按照以下方法開(kāi)展評(píng)價(jià)。

4.1 全基因組測(cè)序(Whole Genome Sequencing, WGS)

4.1.1 基因測(cè)序

對(duì)擬評(píng)價(jià)菌株進(jìn)行全基因組測(cè)序,分別獲得其基因組完成圖和框架圖,測(cè)序報(bào)告應(yīng)包括(但不限于)以下信息:

- DNA提取方法

- 測(cè)序方案及儀器設(shè)備

- 序列組裝方法

- 序列質(zhì)量評(píng)價(jià)

- FASTA文件

- 與預(yù)期基因組大小相關(guān)的重疊群(Contigs)總長(zhǎng)度

- 基因注釋流程

- 對(duì)真菌而言,還需提供從相關(guān)數(shù)據(jù)庫(kù)中獲得的全基因組注釋質(zhì)量信息。

4.1.2 基因序列分析

將擬評(píng)價(jià)菌株的全基因組序列與已有的數(shù)據(jù)庫(kù),包括但不限于毒力基因數(shù)據(jù)庫(kù)(VFDB)、毒力/致病島數(shù)據(jù)庫(kù)(PAIDB)、生物防御數(shù)據(jù)庫(kù)(MvirDB)等最新版本中存儲(chǔ)的序列進(jìn)行比對(duì),并分析擬評(píng)價(jià)菌株遺傳物質(zhì)中與致病明確相關(guān)的已知毒力因子和毒素代謝相關(guān)基因的存在情況。應(yīng)提供包括(但不限于)以下信息的分析報(bào)告:

- 毒力/致病性(或產(chǎn)毒)相關(guān)基因名稱、所在位置、與最新數(shù)據(jù)庫(kù)中已有毒力基因的匹配度等信息

- 編碼的蛋白及序列號(hào)

- 毒力/致病因子(毒素產(chǎn)生、侵襲和粘附因子等)

- 序列長(zhǎng)度覆蓋度≥60%

- 輸入序列與數(shù)據(jù)庫(kù)中序列的匹配度(≥85%)和e值(<10-5)

- 數(shù)據(jù)庫(kù)中已有的菌株名稱

- 基因組圖譜

- 擬評(píng)價(jià)的真菌菌株還應(yīng)根據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道能夠產(chǎn)生的毒素類別,針對(duì)性檢索是否存在毒素合成關(guān)鍵基因及其基因簇。

4.2 動(dòng)物致病性試驗(yàn)

由具備菌種致病性檢驗(yàn)和評(píng)價(jià)資質(zhì)的機(jī)構(gòu),分別按照附錄A、附錄B和附錄C規(guī)定的試驗(yàn)方案,對(duì)擬評(píng)價(jià)的保健食品用細(xì)菌、絲狀真菌、酵母菌株開(kāi)展致病性檢驗(yàn),對(duì)結(jié)果做出評(píng)價(jià)并出具報(bào)告。

4.3 產(chǎn)毒試驗(yàn)

對(duì)某些能夠產(chǎn)生毒素的微生物,應(yīng)在多種基質(zhì)和條件下(單品種固體、多品種固體復(fù)合、不同成分的液體組合等)進(jìn)行產(chǎn)毒試驗(yàn),并按照國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)檢測(cè)方法或國(guó)際組織/相關(guān)國(guó)家規(guī)定的標(biāo)準(zhǔn)檢測(cè)方法進(jìn)行有毒活性代謝產(chǎn)物含量檢測(cè)。

5 結(jié)果判定

5.1 滿足以下所有條件者,可用于保健食品。

5.1.1 動(dòng)物試驗(yàn)顯示無(wú)致病性。

5.1.2 產(chǎn)毒試驗(yàn)結(jié)果顯示,在受試的任何一種基質(zhì)中均不產(chǎn)生有毒活性代謝產(chǎn)物。

5.1.3 根據(jù)現(xiàn)有知識(shí),全基因組序列分析未發(fā)現(xiàn)存在已知的毒力/致病基因(或毒素合成關(guān)鍵基因及其基因簇)。

5.2 全基因組序列中發(fā)現(xiàn)含有已知毒力/致病基因(或毒素合成關(guān)鍵基因及其基因簇),但動(dòng)物試驗(yàn)顯示不具有致病性、或產(chǎn)毒試驗(yàn)檢測(cè)到已知的有毒活性代謝產(chǎn)物但其水平較低,長(zhǎng)期攝入對(duì)人體健康無(wú)影響,結(jié)合國(guó)內(nèi)外使用歷史,可用于保健食品。

5.3 動(dòng)物試驗(yàn)顯示具有致病性,或產(chǎn)生高水平已知有毒代謝產(chǎn)物,長(zhǎng)期攝入可能影響人體健康,不能用于保健食品。

附錄A

(規(guī)范性附錄)

保健食品原料用細(xì)菌致病性檢驗(yàn)方法

1 范圍

本方法規(guī)定了保健食品原料用細(xì)菌的致病性檢驗(yàn)方法。

本方法適用于保健食品原料用細(xì)菌的致病性檢驗(yàn)。

2 設(shè)備和材料

除微生物實(shí)驗(yàn)室常規(guī)滅菌和培養(yǎng)設(shè)備外,其他設(shè)備與材料如下:

2.1 恒溫培養(yǎng)箱:36℃±1℃。

2.2 離心機(jī):離心力³3000 ´ g。

2.3 電子天平:感量0.1 g 和0.001 g。

2.4 比濁儀。

2.5 溫濕度計(jì)。

2.6 顯微鏡:10×~100×。

2.7 厭氧培養(yǎng)裝置:厭氧罐、厭氧箱。

2.8 無(wú)菌錐形瓶:容量100 mL、500 mL。

2.9 無(wú)菌吸管:1 mL(具0.01 mL刻度)、10 mL(具0.1 mL刻度)。

2.10 無(wú)菌試管:16 mm×160 mm。

2.11 無(wú)菌培養(yǎng)皿:直徑90 mm。

2.12 無(wú)菌量筒:容量100 mL。

2.13 微量移液器及配套槍頭:量程為100 μL~1000 μL。

2.14 注射器:量程為100 μL~1000 μL。

2.15 小鼠灌胃針頭。

3 培養(yǎng)基和試劑

3.1 無(wú)菌生理鹽水:商品化的生理鹽水或8.5 g NaCl溶于1000 mL蒸餾水中,分裝后121℃高壓滅菌15 min,備用。

3.2LB肉湯培養(yǎng)基:商品化培養(yǎng)基按照產(chǎn)品說(shuō)明書(shū)用蒸餾水配制,充分加熱溶解后分裝,121℃高壓滅菌15 min,備用。

3.3LB瓊脂平板:商品化培養(yǎng)基按照產(chǎn)品說(shuō)明書(shū)用蒸餾水配制,充分加熱溶解后分裝,121℃高壓滅菌15 min,制備LB瓊脂平板,備用。

3.4 半胱氨酸鹽酸鹽儲(chǔ)備液:稱取500 mg半胱氨酸鹽酸鹽于50 mL無(wú)菌離心管中,加入10 mL蒸餾水,充分溶解后用0.22 μm微孔濾膜過(guò)濾除菌后備用。

3.5 含有半胱氨酸鹽酸鹽的MRS肉湯培養(yǎng)基:商品化MRS肉湯培養(yǎng)基按照產(chǎn)品說(shuō)明書(shū)用蒸餾水配制,充分加熱溶解后分裝,121℃高壓滅菌15 min,待培養(yǎng)基冷卻至50℃左右時(shí),加入按3.4制備的半胱氨酸鹽酸鹽儲(chǔ)備液,使培養(yǎng)基中半胱氨酸鹽酸鹽的終濃度為500μg/mL,備用。

3.6 含有半胱氨酸鹽酸鹽MRS瓊脂平板:商品化MRS瓊脂培養(yǎng)基按照產(chǎn)品說(shuō)明書(shū)用蒸餾水配制,充分加熱溶解后分裝,121℃高壓滅菌15 min,待培養(yǎng)基冷卻至50℃左右時(shí),加入按3.4制備的半胱氨酸鹽酸鹽儲(chǔ)備液,使培養(yǎng)基中半胱氨酸鹽酸鹽的終濃度為500 μg/mL,用于制備含有半胱氨酸鹽酸鹽的MRS瓊脂平板。

3.7 含有半胱氨酸鹽酸鹽的雙歧桿菌瓊脂平板:商品化雙歧桿菌瓊脂培養(yǎng)基按照產(chǎn)品說(shuō)明書(shū)用蒸餾水配制,充分加熱溶解后分裝,121℃高壓滅菌15 min,待培養(yǎng)基冷卻至50℃左右時(shí),加入3.4中制備的半胱氨酸鹽酸鹽儲(chǔ)備液,使半胱氨酸鹽酸鹽的終濃度為500 μg/mL,用于制備含有半胱氨酸鹽酸鹽的雙歧桿菌瓊脂平板。

4 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

選用SPF級(jí)昆明或ICR健康成年小鼠,雌雄各半,體重范圍為18.0 g~22.0 g。

5 操作步驟

所有擬評(píng)價(jià)的菌株必須使用腹腔注射和經(jīng)口灌胃兩種途徑給予動(dòng)物受試物,以評(píng)價(jià)不同受試物暴露途徑對(duì)動(dòng)物的致病性。

5.1 腹腔注射

5.1.1 菌株活化

目前我國(guó)已批準(zhǔn)的可用于保健食品的細(xì)菌主要是雙歧桿菌屬和乳桿菌屬,除這兩個(gè)屬以外的其他新申報(bào)菌種在以下描述中均使用“其他細(xì)菌”。

根據(jù)送檢菌株的保存狀態(tài),將雙歧桿菌和乳桿菌首先接種含有半胱氨酸鹽酸鹽的MRS肉湯、其他細(xì)菌接種LB肉湯或適于該菌生長(zhǎng)的最適液體培養(yǎng)基中,并置適宜的培養(yǎng)條件下(包括培養(yǎng)溫度、濕度,厭氧、需氧、微需氧等)培養(yǎng)一定時(shí)間(培養(yǎng)時(shí)間長(zhǎng)短視不同菌種而異)。

5.1.2 菌懸液制備

將5.1.1中活化的雙歧桿菌接種含有半胱氨酸鹽酸鹽的MRS瓊脂平板或含有半胱氨酸鹽酸鹽的雙歧桿菌瓊脂平板(乳桿菌接種含有半胱氨酸鹽酸鹽的MRS瓊脂平板,其他細(xì)菌接種LB瓊脂平板或適應(yīng)于該菌生長(zhǎng)的最適培養(yǎng)基瓊脂平板),在規(guī)定的適宜培養(yǎng)條件下(包括培養(yǎng)溫度、濕度,厭氧、需氧、微需氧等)培養(yǎng)一定時(shí)間(培養(yǎng)時(shí)間長(zhǎng)短視不同菌種而異)后,刮取平板上的菌落,將其懸浮于無(wú)菌生理鹽水中,充分混勻后,用適量無(wú)菌生理鹽水調(diào)整菌懸液濃度并比濁,使最終菌懸液中的菌濃度達(dá)到5.0×107 CFU/mL,用于小鼠腹腔注射。

5.1.3注射

小鼠不少于40只,雌雄各半,隨機(jī)分成4組(每組不少于10只),包括雄性小鼠無(wú)菌生理鹽水對(duì)照組、雄性小鼠菌懸液組、雌性小鼠無(wú)菌生理鹽水對(duì)照組、雌性小鼠菌懸液組。每只小鼠注射0.2 mL,即受試物組每只小鼠注射菌量不少于1.0×107 CFU。

5.1.4觀察

動(dòng)物腹腔注射后每天觀察1次,至少連續(xù)觀察21 d。

觀察并記錄小鼠皮膚和毛、眼睛和粘膜、呼吸情況、肢體活動(dòng)、行為方式等有無(wú)異常。特別注意觀察是否出現(xiàn)振顫、抽搐、腹瀉、嗜睡、流涎和昏迷等現(xiàn)象。試驗(yàn)前稱量并記錄所有小鼠的體重,試驗(yàn)結(jié)束后稱量并記錄所有存活小鼠的體重。對(duì)于試驗(yàn)期間死亡的小鼠,盡可能精確記錄小鼠的死亡時(shí)間,同時(shí)稱重并記錄。

5.2 經(jīng)口灌胃

5.2.1 菌數(shù)預(yù)估

無(wú)菌吸取上述5.1.1的培養(yǎng)液,分別加至兩個(gè)無(wú)菌離心管中,每管1 mL,3000 ´g 離心10 min,棄去上清液后,用適量無(wú)菌生理鹽水調(diào)整菌懸液濃度并比濁,使最終菌懸液中菌的濃度分別不低于2.5×108 CFU/mL和1.25×109 CFU/mL,并分別記錄每mL培養(yǎng)液離心后所得沉淀物中細(xì)菌數(shù)調(diào)整至2.5×108 CFU/mL和1.25×109 CFU/mL時(shí)需加入的無(wú)菌生理鹽水的體積(mL)。

5.2.2 菌懸液制備

5.2.2.1 培養(yǎng)上清液的制備

根據(jù)受試動(dòng)物總數(shù)和每只動(dòng)物的灌胃體積計(jì)算所需要的受試菌株培養(yǎng)液用量。吸取5.1.1培養(yǎng)液,將培養(yǎng)液一分為二,3000 ´ g 各離心10min后,將上清液分別轉(zhuǎn)至100mL無(wú)菌量筒中,一份上清液用于菌懸液原液的制備,另一份上清液冷凍濃縮至原體積的五分之一,作為5倍濃縮上清液,備用。

5.2.2.2 菌懸液原液的制備

按照5.2.1中獲得的細(xì)菌終濃度達(dá)到2.5×108 CFU/mL所需要的生理鹽水體積,根據(jù)離心的培養(yǎng)物體積,按相同比例加入5.2.2.1獲得的上清液,調(diào)整離心后的沉淀物使其細(xì)菌數(shù)達(dá)到2.5×108 CFU/mL(上清液量不夠時(shí)可用空白培養(yǎng)基補(bǔ)齊)。

5.2.2.3濃縮菌懸液的制備

按照5.2.1中獲得的細(xì)菌終濃度達(dá)到1.25×109 CFU/mL所需要的生理鹽水體積,根據(jù)離心的培養(yǎng)物體積,按相同比例加入5.2.2.1獲得的5倍濃縮上清液,調(diào)整離心后的沉淀物使其細(xì)菌數(shù)達(dá)到1.25×109 CFU/mL。

5.2.3 灌胃

小鼠不少于80只,雌雄各半,分別隨機(jī)分成8組(每組不少于10只),包括雄性小鼠培養(yǎng)基對(duì)照組、雄性小鼠菌懸液組、雄性小鼠5倍濃縮培養(yǎng)基對(duì)照組、雄性小鼠5倍濃縮菌懸液組;雌性小鼠培養(yǎng)基對(duì)照組、雌性小鼠菌懸液組、雌性小鼠5倍濃縮培養(yǎng)基對(duì)照組、雌性小鼠5倍濃縮菌懸液組。各組均以20 mL/kg·BW的體積給小鼠灌胃,連續(xù)灌胃3 d,首次灌胃前小鼠應(yīng)禁食過(guò)夜(16 h),灌胃后3 h~4 h喂食。

5.2.4 觀察

動(dòng)物經(jīng)口灌胃后每天觀察1次,至少連續(xù)觀察21 d,觀察指標(biāo)同5.1.4。

6 結(jié)果與報(bào)告

對(duì)5.1和5.2的動(dòng)物試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析和綜合評(píng)價(jià),包括:

(1)受試物對(duì)動(dòng)物一般健康情況有無(wú)不良影響。

(2)受試物對(duì)動(dòng)物體重等指標(biāo)的影響。

(3)受試物組動(dòng)物死亡情況。

(4)若受試物組動(dòng)物在試驗(yàn)期間未出現(xiàn)中毒癥狀或死亡,且體重等指標(biāo)與對(duì)照組相比差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,即可判定該菌株無(wú)致病性;若受試物組動(dòng)物在試驗(yàn)期間出現(xiàn)中毒癥狀或死亡,或試驗(yàn)期間體重等指標(biāo)與對(duì)照組相比有顯著性差異,即可判定該菌株具有致病性。

附錄B

(規(guī)范性附錄)

保健食品原料用絲狀真菌的致病性檢驗(yàn)方法

1 范圍

本方法規(guī)定了保健食品原料用絲狀真菌的致病性檢驗(yàn)方法。

本方法適用于保健食品原料用絲狀真菌的致病性檢驗(yàn)。

2 設(shè)備和材料

除微生物實(shí)驗(yàn)室常規(guī)滅菌及培養(yǎng)設(shè)備外,其他設(shè)備和材料如下:

2.1 恒溫培養(yǎng)箱:28℃±1℃。

2.2 電子天平:感量為0.1 g。

2.3 錐形瓶:容量為500 mL。

2.4 無(wú)菌吸管:1 mL(具0.01 mL刻度)、10 mL(具0.1 mL刻度)。

2.5 顯微鏡:10×~100×。

2.6 微量移液器及配套槍頭:量程為100 μL~1000 μL。

2.7 血球計(jì)數(shù)板。

2.8 注射器:量程為100 μL~1000 μL。

2.9 小鼠灌胃針頭。

2.10 溫濕度計(jì)。

2.11 接種鉤。

2.12 球磨儀或功能相當(dāng)?shù)膬x器。

2.13 無(wú)菌培養(yǎng)皿:直徑90 mm。

3 培養(yǎng)基和試劑

3.1 麥芽汁瓊脂平板:商品化培養(yǎng)基按照產(chǎn)品說(shuō)明書(shū)用蒸餾水配制,充分加熱溶解后分裝,121℃高壓滅菌15 min,制備麥芽汁瓊脂平板,備用。

3.2 馬鈴薯葡萄糖瓊脂平板:商品化培養(yǎng)基按照產(chǎn)品說(shuō)明書(shū)用蒸餾水配制,充分加熱溶解后分裝,121℃高壓滅菌15 min,制備馬鈴薯葡萄糖瓊脂平板,備用。

3.3 無(wú)菌生理鹽水:商品化的生理鹽水或8.5 g NaCl溶于1000 mL蒸餾水中,分裝后121℃高壓滅菌15 min,備用。

如擬評(píng)價(jià)菌株在上述兩種培養(yǎng)基上的生長(zhǎng)狀態(tài)和產(chǎn)孢子量均不理想,可選用適于該菌株生長(zhǎng)和產(chǎn)孢的其他培養(yǎng)基。

4 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

選用SPF級(jí)昆明或ICR健康小鼠,雌雄各半,體重范圍為18.0 g~22.0 g。

5 操作步驟

所有擬評(píng)價(jià)菌株必須使用腹腔注射和經(jīng)口灌胃兩種途徑給予動(dòng)物受試物,以評(píng)價(jià)不同受試物暴露途徑對(duì)動(dòng)物的致病性。

5.1 腹腔注射

5.1.1 菌懸液制備

5.1.1.1 產(chǎn)孢子量大的菌株:將擬評(píng)價(jià)菌株接種于馬鈴薯葡萄糖瓊脂平板(紅曲霉屬菌株接種麥芽汁瓊脂平板)或適于擬評(píng)價(jià)菌株生長(zhǎng)的培養(yǎng)基平板,28℃±1℃培養(yǎng)7 d~14 d后,挑取平板上的孢子,將其懸浮于無(wú)菌生理鹽水中,充分混勻后,用血球計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)孢子濃度,并用適量無(wú)菌生理鹽水調(diào)整,使其最終濃度不低于5.0×107 CFU/mL。

5.1.1.2 產(chǎn)孢子量少或不產(chǎn)孢子的菌株:將擬評(píng)價(jià)菌株接種于適宜的培養(yǎng)基上, 28℃±1℃下培養(yǎng)7 d~14 d或在適宜的誘導(dǎo)產(chǎn)孢條件下培養(yǎng)一定時(shí)間后,挑取平板的菌絲體及孢子,用球磨儀(或其他功能相當(dāng)?shù)膬x器)將菌絲體磨碎,經(jīng)生理鹽水重懸后,用血球計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù),并用適量無(wú)菌生理鹽水調(diào)整,使菌懸液中菌絲體片段數(shù)/孢子的最終濃度不低于5.0×107 CFU/mL。

5.1.2 注射

小鼠不少于40只,雌雄各半,分別隨機(jī)分成4組(每組不少于10只),包括雄性小鼠生理鹽水對(duì)照組、雄性小鼠菌懸液組、雌性小鼠生理鹽水對(duì)照組、雌性小鼠菌懸液組,每只小鼠注射0.2 mL,即受試物組每只小鼠注射的菌量不少于1.0×107 CFU。

5.1.3觀察

動(dòng)物腹腔注射后每天觀察1次,至少連續(xù)觀察21 d,觀察指標(biāo)同附錄A中的5.1.4。

5.2 經(jīng)口灌胃

5.2.1 菌懸液制備

除制備的菌懸液中真菌孢子/菌絲體片段的濃度不低于2.5×108 CFU/mL外,其他操作步驟同5.1.1。

5.2.2 灌胃

小鼠不少于40只,雌雄各半,分別隨機(jī)分成4組(每組不少于10只),包括雄性小鼠生理鹽水對(duì)照組、雄性小鼠菌懸液組、雌性小鼠生理鹽水對(duì)照組、雌性小鼠菌懸液組,各組均以20 mL/kg·BW的體積給小鼠灌胃1次,灌胃前禁食過(guò)夜(16 h),灌胃后3 h~4 h喂食。

5.2.3 觀察

動(dòng)物經(jīng)口灌胃后每天觀察1次,至少連續(xù)觀察21 d,觀察指標(biāo)同附錄A中的5.1.4。

6 結(jié)果與報(bào)告

對(duì)5.1和5.2的動(dòng)物試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析和綜合評(píng)價(jià),內(nèi)容同附錄A中的條款6。

附錄C

(規(guī)范性附錄)

保健食品原料用酵母的致病性檢驗(yàn)方法

1 范圍

本方法規(guī)定了保健食品原料用酵母的致病性檢驗(yàn)方法。

本方法適用于保健食品原料用酵母的致病性檢驗(yàn)。

2 設(shè)備和材料

除微生物實(shí)驗(yàn)室常規(guī)滅菌及培養(yǎng)設(shè)備外,其他設(shè)備和材料如下:

2.1 恒溫培養(yǎng)箱:28℃±1℃。

2.2 電子天平:感量為0.1 g。

2.3 錐形瓶:容量為500 mL。

2.4 無(wú)菌吸管:1 mL(具0.01 mL刻度)、10 mL(具0.1 mL刻度)。

2.5 顯微鏡:10×~100×。

2.6 微量移液器及配套槍頭:量程為100 μL~1000 μL。

2.7 血球計(jì)數(shù)板。

2.8 注射器:量程為100 μL~1000 μL。

2.9 小鼠灌胃針頭。

2.10 溫濕度計(jì)。

2.11 接種環(huán)。

2.12 離心機(jī):離心力³3000 ´ g。

2.13 無(wú)菌培養(yǎng)皿:直徑90 mm。

2.14 無(wú)菌量筒:容量100 mL。

3 培養(yǎng)基和試劑

3.1 麥芽汁瓊脂平板:商品化培養(yǎng)基按照產(chǎn)品說(shuō)明書(shū)用蒸餾水配制,充分加熱溶解后分裝,121℃高壓滅菌15 min,制備麥芽汁瓊脂平板,備用。

3.2 麥芽汁培養(yǎng)基:商品化培養(yǎng)基按照產(chǎn)品說(shuō)明書(shū)用蒸餾水配制,充分加熱溶解后分裝,121℃高壓滅菌15 min,制備麥芽汁培養(yǎng)基,備用。

3.3 無(wú)菌生理鹽水:商品化的生理鹽水或8.5 g NaCl溶于1000 mL蒸餾水中,分裝后121℃高壓滅菌15 min,備用。

如擬評(píng)價(jià)菌株在麥芽汁培養(yǎng)基上的生長(zhǎng)狀態(tài)不理想,可選用適于該菌株生長(zhǎng)的其他培養(yǎng)基。

4 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

選用SPF級(jí)昆明或ICR健康小鼠,雌雄各半,體重范圍為18.0 g~22.0 g。

5 操作步驟

所有擬評(píng)價(jià)菌株必須使用腹腔注射和經(jīng)口灌胃兩種途徑給予動(dòng)物受試物,以評(píng)價(jià)不同受試物暴露途徑對(duì)動(dòng)物的致病性。

5.1 腹腔注射

5.1.1 菌懸液制備

將擬評(píng)價(jià)菌株接種麥芽汁瓊脂平板,28℃±1℃培養(yǎng)一定時(shí)間(培養(yǎng)時(shí)間長(zhǎng)短視不同菌種而異)后,刮取平板上的菌落,將其懸浮于無(wú)菌生理鹽水中,充分混勻后用血球計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù),并用適量無(wú)菌生理鹽水調(diào)整菌懸液濃度,使菌懸液中菌的最終濃度不低于5.0×107 CFU/mL。

5.1.2注射

小鼠不少于40只,雌雄各半,分別隨機(jī)分成4組(每組不少于10只),包括雄性小鼠生理鹽水對(duì)照組、雄性小鼠菌懸液組、雌性小鼠生理鹽水對(duì)照組及雌性小鼠菌懸液組,每只小鼠注射0.2 mL,即受試物組每只小鼠注射的菌量不少于1.0×107 CFU。

5.1.3觀察

動(dòng)物腹腔注射后每天觀察1次,至少連續(xù)觀察21 d,觀察指標(biāo)同附錄A中的5.1.4。

5.2 經(jīng)口灌胃

5.2.1 菌株培養(yǎng)

將菌株接種到麥芽汁培養(yǎng)基上,28℃±1℃培養(yǎng)一定時(shí)間(培養(yǎng)時(shí)間長(zhǎng)短視不同菌種而異)后,備用。

5.2.2 菌數(shù)預(yù)估

無(wú)菌吸取上述5.2.1的培養(yǎng)液,分別加至兩個(gè)無(wú)菌離心管中,每管1 mL,3000 ´ g 離心10 min,棄去上清液后,用適量無(wú)菌生理鹽水調(diào)整菌懸液濃度并計(jì)數(shù),使最終菌懸液中菌的濃度分別不低于2.5×108 CFU/mL和6.25×108 CFU/mL,并分別記錄每mL培養(yǎng)液離心后所得沉淀物中酵母菌數(shù)調(diào)整至2.5×108 CFU/mL和6.25×108 CFU/mL時(shí)加入無(wú)菌生理鹽水的體積(mL)。

5.2.3 菌懸液制備

5.2.3.1 培養(yǎng)上清液的制備

根據(jù)受試動(dòng)物總數(shù)和每只動(dòng)物的灌胃體積計(jì)算所需要的受試菌株培養(yǎng)液用量,繼而將培養(yǎng)液一分為二,3000 ´ g 各離心10 min后,將上清液分別轉(zhuǎn)至100 mL無(wú)菌量筒中,一份上清液作為菌懸液原液的制備,另一份上清液冷凍濃縮至原體積的五分之二,作為2.5倍濃縮上清液,備用。

5.2.3.2 菌懸液原液的制備

按照5.2.2中獲得的酵母終濃度達(dá)到2.5×108 CFU/mL所需要的生理鹽水體積,根據(jù)離心的培養(yǎng)物體積,按相同比例加入5.2.3.1獲得的上清液,調(diào)整離心后的沉淀物使其酵母數(shù)達(dá)到2.5×108 CFU/mL(上清液量不夠時(shí)可用空白培養(yǎng)基補(bǔ)齊)。

5.2.3.3 濃縮菌懸液的制備

按照5.2.2中獲得的酵母菌終濃度達(dá)到6.25×108 CFU/mL所需要的生理鹽水體積,根據(jù)離心的培養(yǎng)物體積,按相同比例加入5.2.3.1獲得的培養(yǎng)上清液2.5倍濃縮液,調(diào)整離心后的沉淀物使其菌數(shù)達(dá)到6.25×108 CFU/mL。

5.2.4 灌胃

小鼠不少于80只,雌雄各半,分別隨機(jī)分成8組(每組不少于10只),包括雄性小鼠培養(yǎng)基對(duì)照組、雄性小鼠菌懸液組、雄性小鼠2.5倍濃縮培養(yǎng)基對(duì)照組、雄性小鼠2.5倍菌懸液組;雌性小鼠培養(yǎng)基對(duì)照組、雌性小鼠菌懸液組、雌性小鼠2.5倍濃縮培養(yǎng)基對(duì)照組及雌性小鼠2.5倍菌懸液組。各組均以20 mL/kg·BW的體積給小鼠灌胃1次,灌胃前應(yīng)禁食過(guò)夜(16 h),灌胃后3 h~4 h喂食。

5.2.5 觀察

動(dòng)物經(jīng)口灌胃后每天觀察1次,至少連續(xù)觀察21 d,觀察指標(biāo)同附錄A中的5.1.4。

6 結(jié)果與報(bào)告

對(duì)5.1和5.2的動(dòng)物試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析和綜合評(píng)價(jià),內(nèi)容同附錄A中的條款6。


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